OCI-LY10細胞培養(yǎng)基

細胞名稱：OCI-LY10     彌漫大B細胞**瘤細胞
組織來源：B**細胞
培養(yǎng)條件：1640 +10% FBS 
形　　態(tài)：懸浮；**母細胞樣

OCI-LY10細胞培養(yǎng)基傳代操作：

       1.吸除培養(yǎng)瓶內舊培養(yǎng)液。
       2.加入無菌pbs洗液（5-8mL）輕輕潤濕細胞，稀釋多余的培養(yǎng)基，之后吸走洗液，動作要輕，不可吹打到細胞。
       3.向瓶內加入含0.25%EDTA的胰蛋白酶混合液少許，以能覆滿瓶底為限。 
       4.置溫箱中2~5分鐘，一旦鏡檢發(fā)現(xiàn)細胞質回縮，細胞間隙增大后，細胞變圓，比較松動后，立即終止消化。
       5.加入該細胞對應的培養(yǎng)基6mL（T25培養(yǎng)瓶）或12mL（T75培養(yǎng)瓶）終止消化。
       6.用吸管通過吸取的培養(yǎng)基輕輕反復吹打瓶壁細胞，OCI-LY10細胞培養(yǎng)基使之從瓶壁脫離形成細胞懸液。吹打時應盡量以*少的次數(shù)將細胞從壁上吹下，不僅要控制吹打的力度、次數(shù)，還要注意要將細胞盡可能吹成單個。這樣既能減少死細胞，又能便于細胞再次均勻貼壁生長。
       7.依據(jù)傳代比例，將細胞懸液分瓶，再補充培養(yǎng)基后，靜置于溫箱培養(yǎng)，直止貼壁。
        貼壁細胞在培養(yǎng)瓶長成致密單層后，繼續(xù)生長的空間不足，培養(yǎng)基中的營養(yǎng)成份也消耗較多，同時代謝廢物也有較多堆積，需要分瓶培養(yǎng)，對細胞進行傳代擴增。對于貼壁不太緊的細胞如293，可以直接吹散后分瓶。而對于貼壁較緊的細胞如CHO，則需要以胰酶消化后再吹散分瓶。以筆者的經驗，以輕吹或加培養(yǎng)液后輕搖可下較好，但對于經驗不太充分的實驗者而言是較難判斷掌握的。
對于懸浮細胞換液時只需要補液就行。
        懸浮細胞的傳代則不需要用胰酶消化，OCI-LY10細胞培養(yǎng)基直接通過計數(shù)算好傳代的比例，直接分瓶，補液。有些懸浮細胞趨于成團生長，此時細胞生長狀態(tài)良好，當補液時，避免吹打。典型實例：jurkat就是成團生長。當jurkat細胞密度比較大時，可將培養(yǎng)瓶豎直放置2分鐘左右，待大部分細胞沉下，吸走上層清液，補充等量的新鮮培養(yǎng)基。而HL-60就不一樣了，為懸浮單個生長，如果發(fā)現(xiàn)該細胞包團，說明細胞狀態(tài)不好，不加以正確的處理，*終會發(fā)生凋亡。